食安寻FoodSeek

实验室灭菌指南

理化检验 实验室灭菌方法 实验室灭菌干热灭菌湿热灭菌紫外线灭菌过滤除菌化学消毒
本文系统介绍了实验室常用的消毒灭菌方法,包括物理方法(干热灭菌、湿热灭菌、紫外线灭菌、过滤除菌)和化学方法(消毒剂、抗生素),并详细说明了各种方法的适用范围、操作参数、注意事项,以及灭菌验证、生物指示剂选择等质量控制要点。

📋 核心要点

📖 详细内容

目前常用的消毒灭菌方法多采用物理方法(如干热灭菌法、湿热灭菌法、过滤除菌法、射线杀菌法等)和化学方法(消毒剂、抗生素)两大类。

是利用恒温干燥箱内120ºC~150ºC的高热,并保持90~120分钟,杀死细菌和芽孢,达到灭菌目的的一种方法。

主要适用于不便在压力蒸汽灭菌器中进行灭菌,且不易被高温损坏的玻璃器皿、金属器械以及不能和蒸汽接触的物品的灭菌。用此方法灭菌的物品干燥,易于贮存。

酒精灯火焰烧灼灭菌法也是属于干热灭菌的方法之一,在进行动物细胞体外培养工作时,常须利用工作台面上的酒精灯火焰对金属器具及玻璃器皿口缘进行补充灭菌。

压力蒸汽湿热灭菌法是目前最常用的一种灭菌方法。它利用高压蒸汽以及在蒸汽环境中存在的潜热作用和良好的穿透力,使菌体蛋白质凝固变性而使微生物死亡。

适合于布类工作衣、各种器皿、金属器械、胶塞、蒸馏水、棉塞、纸和某些培养液的灭菌。高压蒸汽灭菌器的蒸汽压力一般调整为1.0~1.1kg/cm2,维持20~30min即可达到灭菌效果。

利用紫外线灯进行照射灭菌的方法。紫外线是一种低能量的电磁辐射,可以杀灭多种微生物。紫外线的作用机制是通过对微生物的核酸及蛋白质等的破坏作用而使其灭活。

适合于实验室空气、地面、操作台面灭菌。灭菌时间为30min。用紫外线杀菌时应注意,不能边照射边进行实验操作,因为紫外线不仅对人体皮肤有伤害,而且对培养物及一些试剂等也会产生不良影响。

是将液体或气体通过有微孔的滤膜过滤,使大于滤膜孔径的细菌等微生物颗粒阻留,从而达到除菌的方法。过滤除菌法大多用于遇热易发生分解、变性而失效的试剂、酶液、血清、培养液等。

目前,常用微孔滤膜金属滤器或塑料滤器正压过滤除菌,或用玻璃细菌滤器、滤球负压过滤除菌。滤膜孔径应在0.22~0.45μm范围内或用更小的细菌滤膜,溶液通过滤膜后,细菌和孢子等因大于滤膜孔径而被阻,并利用滤膜的吸附作用,阻制小于滤膜孔径的细菌透过。

用于那些不能利用物理方法进行灭菌的物品、空气、工作面、操作者皮肤、某些实验器皿等。

常用的化学消毒剂包括甲醛、高锰酸钾、70%~75%乙醇、过氧乙酸、来苏尔水、0.1%新洁尔灭、环氧乙烷、碘伏或碘酊等。其中利用70%~75%乙醇、0.1%~0.2%氯化汞、10%次氯酸钠、饱和漂白粉等进行实验材料的灭菌;利用甲醛加高锰酸钾[(2mL甲醛+1g高锰酸钾)/m3]或乙二醇(6mL/m3)等加热熏蒸法进行无菌室和培养室的消毒。

在使用时应注意安全,特别是用在皮肤或实验材料上的消毒剂,须选用合适的药剂种类、浓度和处理时间,才能达到安全和灭菌的目的。

主要用于培养液,是培养过程中预防微生物污染的重要手段以及作为微生物污染不严重时的“急救”措施。常用的抗生素有青霉素、链霉素和新霉素等。

培养材料进行培养、观察或更换培养液时,必须从各方面防止任何污染物进入培养液或容器,所以无菌操作室的灭菌是至关重要的。

由于无菌操作室的污染来源主要是空气中的细菌和真菌孢子,因此长期停用后的无菌操作室应进行熏蒸灭菌,熏蒸是用高锰酸钾+甲醛[(2ml甲醛+1g高锰酸钾)/m3]进行无菌室的灭菌。

经常使用的无菌操作室,在每次使用前都应进行地面卫生清洁,并用紫外线灯照射30 min,进行空气灭菌。对超净工作台,每次操作前用紫外灯照射30min,然后用70%~75%酒精擦拭。

培养液在制备过程中带有各种杂菌,分装后应立即灭菌,或在24小时内完成灭菌工序。

目前常用过滤除菌法除去培养物操作液和培养液中的细菌。或对培养液中耐热组分先进行高压蒸汽灭菌,然后在无菌室加入经过过滤除菌的不耐热溶液,混匀后分装备用。

使用高压蒸汽灭菌器灭菌时,将分装好的培养液放入底部有一定量(淹没加热管)凉水的高压蒸汽灭菌器内,增压至0.35~0.4kg/cm2时排净灭菌器内冷空气,以便使蒸汽能到达各个消毒部位,保证消毒灭菌彻底。然后继续加压加热,当压力表读数达到1.0~1.1kg/cm2为121ºC,保持15~20 min即可。

由于消毒灭菌效果取决于温度而不是压力,所以在一定压力下保持较长的消毒灭菌时间是必须的。

在121ºC的蒸汽温度下可以很快杀死各种细菌及高度耐热的芽孢杆菌,因此许多培养液的消毒灭菌压力、温度一般保持在1.0~1.1 kg/cm2、121ºC。

消毒灭菌时间与需要消毒灭菌的培养液量密切相关(表2-3),时间不足达不到灭菌效果,时间过长培养液内的一些化学物质遭到破坏,影响培养液成分。消毒灭菌结束后,关闭热源,只有当灭菌器内压力降为零时才能打开放气阀,排除剩余蒸汽,取出培养液。不可在压力较高时打开放气阀,引起减压沸腾,使容器中液体溢出。

培养液组成中如含有遇热易分解的物质,则需用过滤方法消毒灭菌。

首先对培养液中耐热组分进行高压蒸汽灭菌后放置在

❓ 常见问题

Q: 实验室常用的灭菌方法有哪些?
A: 实验室常用灭菌方法包括物理方法和化学方法。物理方法有干热灭菌(120-150℃、90-120分钟)、湿热灭菌(高压蒸汽1.0-1.1kg/cm²、121℃、20-30分钟)、紫外线灭菌(30分钟)和过滤除菌(0.22-0.45μm滤膜)。化学方法包括使用70-75%乙醇、甲醛、高锰酸钾等消毒剂,以及抗生素。
Q: 高压蒸汽灭菌的关键参数和注意事项是什么?
A: 高压蒸汽灭菌的关键参数为压力1.0-1.1kg/cm²、温度121℃、时间20-30分钟。注意事项包括:灭菌前需排净冷空气;灭菌时间根据培养液量调整;灭菌结束后需待压力降为零再打开放气阀,防止减压沸腾;定期验证灭菌效果,时效不超过半年。
Q: 不同灭菌方法对应的生物指示剂是什么?
A: 湿热灭菌使用嗜热脂肪芽孢杆菌孢子(ATCC7953等,活孢子数5×10⁵-5×10⁶个/片);干热灭菌使用枯草芽孢杆菌孢子(ATCC9372等,活孢子数5×10⁵-5×10⁶个/片);辐射灭菌使用短小芽孢杆菌孢子(ATCC27142等,活孢子数5×10⁷-5×10⁸个/片);环氧乙烷灭菌使用枯草芽孢杆菌孢子;气态过氧化氢灭菌使用嗜热脂肪芽孢杆菌孢子;过滤除菌使用缺陷假单胞菌(ATCC19146)。