1、薄层色谱鉴别时，可以将展开剂放在双槽层析缸的一边，然后把点好的板子放在双槽的另一边饱和半小时候，然后再放在展开剂的一边展开，这样跑出来的点比较圆。
2、在一般的过滤溶液时，如果不好过滤，建议将溶液离心后用上清液过滤，也可以用抽滤，这样不会影响测定结果，也不浪费时间。
3、做快速水分法时，连续测定样品，须等温度降下来后再加样，否则在加样过程中受热水分蒸发造成结果偏低。
4、HPLC中流动相中加了三乙胺可以减小拖尾,关键是pH值。
5、用液相测含量时，因每次配制的流动相有差异，按标准配制的流动相，有时峰分不开，可以适当调整比例，改善效果。
6、抗生素的效价测定时加菌量一定要准确 否则结果会相差很大 不建议使用10mL的刻度吸管无菌实验时，HTY601集菌仪使用之前先观察集菌培养器的软管走势是否顺畅，这时不宜使用太小的转数，因为很容易挤断软管，大约在70转数即可。
7、0.05M磷酸氢二钠250mL与250mL乙腈互溶后有白色絮状沉淀，后超声逐渐溶解变澄清。
8、做氢氧化钠的氯化物检查时,先要将其用稀硝酸调节PH,否则结果很不准确!
9、在使用全自动电子天平时，尤其是十万分之一的天平，很容易发生读数飘移。在称量过程中，注意关好门窗，确保称量环境的安静，在天平的不需加样的一侧用一本厚重的文件夹挡住，会有利于维护环境的稳定。
10、做马来酸氯苯那敏的有关物质的时候，采用气相法，样品的溶剂峰旁边会出来一个大峰，此峰在对照品中并无出现，容易疑惑是杂质并判断为超标，实际此峰是马来酸的峰，即马来酸氯苯那敏进样后会分解成马来酸与氯苯那敏两个峰。在做判断时不止应扣除溶剂峰，还应扣除马来酸峰。这样才是真正结果。
11、若离心的方法损失有效成分较多，则可以选择冷置一夜，可以节省能源呵。
12、绿原酸对照品的溶液很不稳定,最好现配现用。
13、在做液相时候，如果保留时间不一致，看看室内温度变化情况，还有就是你要是手动进样时，进样速度也有关系!
14、检测硫酸阿米卡星的硫酸盐，要求在紫色开始消失的时候加50mL乙醇，可是开始消失的点不好判断，一般是在加了5mL多EDTA滴定液之后就加乙醇，滴定结果一般消耗7-8mL，加的太晚有时候很难出终点。
15、点样之前先将薄层板活化一下，能够使结果更加优化，我通常放在烘箱里烤5分钟，再取出放冷。另外，展开剂应尽量精确，尤其是比例比较接近的是放在110℃烘箱烘30min,我觉得不应该等到放冷，立马就可以点样，原因：
(1)刚活化的板温度高，散热快;
(2)放冷的过程种很容易吸潮。
16、用HPLC法测物质有关物质时，样品放置的时间以及放置的温度极其重要，所以最好现用现配，或者配好的样品液一定要低温保存，条件允许的话可以加一个自动上样控温装置，这样可防止杂质的降解，保证结果准确度。
17、做薄层展开的时候，特别是中药的品种，一定要注意温度的变化!比如人参就得再10度一下才能分开。再就是预饱和，这个环节也很重要!
18、有些溶剂在分层中很容易乳化，建议大家不要用力摇晃，如果是鉴别就颠倒着轻轻晃就可以了，如果已经乳化了建议用热风吹效果好。如果是含量测定乳化后建议冷冻效果要比热风吹好。如非必要不要加多余的东西，结果会有影响。
19、做HPLC时大多数都可以在泵头和管路连接处发现有白色的结晶出现。产生这种结晶的原因是使用了含缓冲盐的流动相后，对系统冲洗时间不够，管路中残留了少量的缓冲盐随流动相渗出造成的。如果有朋友发现相同的问题，只要延长冲洗时间就可以解决。
20、在做薄层时层析缸的气密性也很重要，新的层析缸最好在缸口涂点凡士林。做滴定时一定要注意所配溶液是否和以前的溶液的性状相同(如：颜色)，如果不同就要考虑试剂、溶剂和器皿是不是变质或被污染了。
21、做紫外时因重视仪器的预热时间，预热时间太短，对实验结果的影响很大。
22、我看到有很多实验员在配置薄层板的CMC-Na溶液时喜欢加热，使其快速完全的溶解。这样做有一个很大的弊端，制作出来的薄层板是非常不平滑的，建议还是让其自己慢慢溶解，即时不能完全溶解，也可以使用。
23、我们在做不同厂家同一原料药的熔点时发现该原料药的熔点均不符合规定，在查找原因时，我们发现是介质硅油的原因。因为在测定熔点前看到介质硅油很脏了，里面有很多黑色浮游物，我们用棉花对其进行了过滤，硅油是清了，但测出的熔点数据错了。换了新的硅油，熔点正常。
24、在进行氯化物检测时，如果使用滤纸过滤，一定要先用稀硝酸处理后在过滤样品，否则会对结果产生很大影响。
25、仪器分析中所用的试剂质量很关键，我们做抗生素的聚合物含量时，经常在聚合物出峰的时间也出现倒峰，查找了所有仪器和溶剂，最后确定是一个化学试剂厂生产的磷酸二氢钠的原因。
26、用安捷伦1100高效液相